Detección de los tipos virales 16,18, 31 y 33 de papillomavirus humano en displasias severas y carcinoma in situ de cuello uterino
Resumen
Introducción: las displasias severas y los carcinomas in situ son los verdaderos precursores del cáncer de cuello uterino. La infección por el virus del papiloma humano (HPV) es un factor etiológico importante en el origen de las lesiones intraepiteliales escamosas de alto grado (H-SIL) y el cáncer de cuello uterino de tipo epidermoide.
Objetivo: determinar la prevalencia de los tipos de HPV descriptos como más frecuentes en otras regiones, en una muestra seleccionada de mujeres de Uruguay portadoras de displasias severas y carcinoma in situ de cuello uterino, con su diagnóstico confirmado por el estudio histológico de piezas de conización quirúrgica.
Material y método: Se seleccionó una muestra de piezas de conización quirúrgica realizadas a mujeres portadoras de displasias severas y carcinomas intraepiteliales epidermoides de cuello uterino procedentes de Montevideo y Canelones. Las piezas fueron fijadas en formol y luego incluidas en parafina.
Resultados: se detectó la presencia de ácido desoxirribonucleico (ADN) de HPV en 39 de las 49 (80%).
El tipo viral hallado con mayor frecuencia fue el HPV 16 en 23 de los conos (47%), seguido por el tipo 33 con siete casos (14%) y el tipo 31 en dos casos (4%). Se destaca la ausencia del tipo HPV 18 en esta muestra.
Conclusión: se demostró la frecuente asociación entre infección por HPV y las lesiones precursoras del cáncer de cuello uterino. Dentro de los cuatro tipos de HPV investigados y descriptos como más frecuentes en otras regiones, se detectó con mayor frecuencia el tipo 16 al igual que lo ocurrido en otras regiones del mundo.
Citas
(2) National Cancer Institute Workshop. The 1988 Bethesda System for reporting cervical/vaginal cytological diagnoses. JAMA 1989; 262(7): 931-4.
(3) Solomon D, Davey D, Kurman R, Moriarty A, O’Connor D, Prey M, et al. The 2001 Bethesda System: terminology for reporting results of cervical cytology. JAMA 2002; 287(16): 2114-9.
(4) Ostor G. Natural history of cervical Intraepitelial neoplasia: a critical review. Int J Gynecol Pathol 1993; 12(2): 186-92.
(5) Walboomers JM, Jacobs MV, Manos MM, Bosch FX, Kummer JA, ShahKV, et al. Human Papillomavirus is a necessary cause of invasive cervical cancer worldwide. J Pathol 1999; 189(1): 12-9.
(6) Muñoz N, Castellsagué X, Berrington A, Gissman L. Chapter 1: HPV in the etiology of human cancer. Vaccine 2006; 24 (Suppl 3): S1-10.
(7) Bosch FX, Lorincz A, Muñoz N, Meijer CJ, Shah K. The causal relation between human papillomavirus and cervical cancer. J Clin Pathol 2002; 55(4): 244-65.
(8) Clifford GM, Smith JS, Aguado T, Franceschi S. Comparison of HPV type distribution in high grade cervical lesions and cervical cancer: a meta-analysis. Br J Cancer 2003; 89(1): 101-5.
(9) Clifford G, Franceschi S, Diaz M, Muñoz N, Villa L. Chapter 3: HPV type distribution in women with and without cervical neoplastic diseases. Vaccine 2006; 24 Suppl 3: S26-34.
(10) Cuschieri K, Cubie H, Whitley M, Gilkinson G, Arends, Graham C, et al. Persistent high risk HPV infection associated with development of cervical neoplasia in a prospective population study. J Clin Pathol 2005; 58(9): 946-50.
(11) Solomon D. Role of triage testing in cervical cancer screening. J Natl Cancer Inst Monogr 2003; (31): 97-101.
(12) Sambrook J, Fritsch EF, Maniatis T. Molecular cloning: a laboratory manual. 2 ed. New York: Cold Spring Harbor, 1989.
(13) De Roda Husman AM, Walboomers JM, van den Brule AJ, Meijer CJ, Snijders PJ. The use of general primers GP5 and GP6 elongated at their 3’ ends with adjacent highly conserved sequences improves human papillomavirus detection by PCR. J Gen Virol 1995; 76 (pt 4):1057-62.
(14) Baay MF, Quint WG, Koudstaal J, Hollema H, Duk JM, Burger MP, et al. Comprehensive study of several general and type-specific primer pairs for detection of human papillomavirus DNA by PCR in paraffin-embedded cervical carcinomas. J Clin Microbiol 1996; 34(3): 745-47.
(15) Sanguinetti CJ, Dias Neto E, Simpson AJ. Rapid silver staining and recovery of PCR products separated on polyacrylamide gels. Biotechniques 1994; 17(5): 914-21.
(16) International Agency for Research on Cancer. International Agency for Research on Cancer-Cervical cancer screening. IARC Handbooks of cancer prevention Nro. 10. Lyon: IARC, 2005.
(17) Insigna R, Liaw K, Johnson L, Madeleine M. A systematic review of the prevalence and attribution of human papillomavirus types among cervical, vaginal, and vulvar precancers and cancers in the United States. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2008; 17(7): 1611-22.
(18) Wheeler C, Hunt W, Joste N, Key C, Quint W, Castle P. Human papillomavirus genotype distributions: implications for vaccination and cancer screening in the United States. J Natl Cancer Inst 2009; 101(7): 475-87.
(19) Sigurdson K, Taddeo F, Benediktsdottir K, Olafsdottir K, Sigvaldason H, Oddsson K, et al. HPV genotypes in CIN 2-3 lesions and cervical cancer: a population-based study. Int J Cancer 2007; 121(12): 2682-7.
(20) Smith J, Lindsay L, Hoots B, Keys J, Franceschi S, Winer R, et al. Human papillomavirus type distribution in invasive cervical cancer and high grade cervical. Lesions: a meta-analysis update. Int J Cancer 2007; 121(3): 621-32.
(21) Koshiol J, Lindsay L, Pimenta J, Poole C, Jenkins D, Smith J. Persistent human papillomavirus infection and cervical neoplasia: a systematic review and meta-analysis. Am J Epidemiol 2008; 168 (2): 123-37.
(22) Maucort-Boulch D, Franceschi S, Plummer M. International correlation between human papillomavirus prevalence and cervical cancer incidence. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev 2008; 17(3): 717-20.
